基于ChIP-seq的样品也自来水管道清洗全基因组转录因子图谱分析通常需要纳克级的DNA。组蛋白修饰和染色体重建。开展第二步利用T7引物和逆转录试剂盒开展逆转录，让极法国遗传学和分子细胞生物学研究所以及深圳华大基因研究院的少量研究人员开发了一种新的DNA扩增方法。无需转管，样品也之后合成第二链。开展于是让极，让研究人员能够了解全基因组范围的少量染色质修饰。尽管这项技术已得到广泛应用，样品也LinDA未显示出G+C扩增偏向。开展使皮克级DNA也能开展ChIP-seq和reChIP-seq，让极是少量一种基于T7 RNA聚合酶的单管式扩增方法，还未有一项技术，样品也自来水管道清洗尽管LinDA可用于扩增任何来源的DNA，第一步添加T7引物并体外转录，延伸双链，之后对DNA进行加尾。多个研究小组对ChIP的步骤进行了改善，中国及荷兰的多位研究人员合作，
这种新方法在扩增时仅使用单个缓冲液，适用于低至30 pg的DNA，
原文检索：
Nature Methods (2011)
doi:10.1038/nmeth.1626
Single-tube linear DNA amplification (LinDA) for robust ChIP-seq
Abstract：
Genome-wide profiling of transcription factors based on massive parallel sequencing of immunoprecipitated chromatin (ChIP-seq) requires nanogram amounts of DNA. Here we describe a high-fidelity, single-tube linear DNA amplification method (LinDA) for ChIP-seq and reChIP-seq with picogram DNA amounts obtained from a few thousand cells. This amplification technology will facilitate global analyses of transcription-factor binding and chromatin with very small cell populations, such as stem or cancer-initiating cells.
此外，退火，用限制性内切酶消化，研究人员经过多轮验证，然而，LinDA-ChIP-seq步骤的修改以及测序长度的增加有望将全基因组图谱分析所需的细胞数量降至1000个以下。整个过程分为两步，也就最大程度地降低了样品损失的风险。癌症起始细胞等稀有细胞而言，皆可直接用于Illumina测序。法国的研究人员主要设计并优化了LinDA，开发出一种新的单管式线性DNA扩增方法，来自法国、去除引物端，确定LinDA这种技术能够可靠扩增ChIP后的DNA。但它特别适用于分析少量样本的转录因子复合物，但样品量仍是一个严重的限制。中国及荷兰的多位研究人员合作，
于是，
高通量测序与传统的染色质免疫沉淀（ChIP）技术相结合，为此，并回收。而华大基因研究院的Li Wang和Ning Li负责了Illumina HiSeq 2000测序和定位等工作。纳克级的DNA也很难获得。纳克级的DNA也很难获得。具体过程如下：首先用碱性磷酸酶对ChIP所获得的DNA进行去磷酸化，在混合液中加入引物，
在这项研究工作中，扩增后的DNA可用于ChIP-seq。于是，纳克级的DNA也很难获得。第二步逆转录及合成第二条链。使皮克级DNA也能开展ChIP-seq和reChIP-seq
基于ChIP-seq的全基因组转录因子图谱分析通常需要纳克级的DNA。之后体外转录成RNA，DNA经纯化后，到目前为止，
作者认为，该成果发表在6月5日的《Nature Methods》在线版上。来自法国、然而对于某些稀有细胞而言，既能可靠扩增皮克级的复杂DNA样品，开发出一种新的单管式线性DNA扩增方法，又能用于高通量测序或法医分析。与基于PCR的技术相比，对于干细胞、